Кролики — мастера маскировки боли и стресса. В дикой природе проявление слабости делает их уязвимыми, поэтому они инстинктивно скрывают дискомфорт. Однако при боли и стрессе в организме кролика происходят физиологические изменения, которые можно объективно оценить с помощью глюкометра.

Физиология стресса: почему повышается глюкоза?

При болевом синдроме и стрессе активируются две ключевые системы:

1. Симпато-адреналовая система → выброс адреналина → распад гликогена в печени (гликогенолиз) → резкий подъем глюкозы в крови.
2. Ось гипоталамус-гипофиз-надпочечники → выделение кортизола → усиление глюконеогенеза (синтез глюкозы из неуглеводных источников).

Результат: гипергликемия (уровень глюкозы выше нормы 4,4–8,3 ммоль/л).

Как правильно измерить глюкозу у кролика?

❌ Почему не стоит прокалывать уши?

• Ушные вены могут понадобиться ветеринару для катетеризации.
• Частые проколы приводят к рубцеванию тканей, осложняя дальнейшую постановку катетера.
• Процедура болезненна и вызывает сильный стресс.

✅ Оптимальный метод: забор крови из среза когтя

Что понадобится?

• Глюкометр (рекомендуется Contour TS – точен, требует малого объема крови). Можно использовать любой глюкометр с тест полосками, которые с вертикальным (торцевым) нанесением.
• Острый когтерез (специальный для грызунов/кроликов).
• Антисептик (хлоргексидин 0,05%).
• Кровоостанавливающее средство (сухой перманганат калия, перекись или «Капрамин»).

Пошаговая инструкция:

1. Обработайте коготь хлоргексидином.
2. Срежьте 3-5 мм части когтя (нужно слегка зацепить розовую «живую» зону).
3. Нанесите каплю крови на тест-полоску глюкометра.
4. Остановите кровь:
   • Приложите кристалл перманганата калия с помощью слегка смоченной ватной палочки на 1–2 секунды (быстро коагулирует кровь).
   • Альтернатива: давить стерильной салфеткой 1–2 минуты.

Важно!

• Не используйте спирт – он искажает показания и раздражает кожу.
• Если кровь не появляется – слегка помассируйте лапку.

Интерпретация результатов

• Норма: 4,4–8,3 ммоль/л.
• Умеренная гипергликемия (8–12 ммоль/л): стресс, начальная стадия ЖКТ-стаза.
• Критическое повышение (>12 ммоль/л): сильная боль, риск кетоацидоза – срочно к ветеринару!

Рекомендуемый глюкометр: Contour TS

Почему именно он?

• Вертикальное (торцевое) нанесение – кровь подносится к краю полоски, и капиллярная система сама втягивает нужный объем.
• Минимальный объем крови – требуется всего 0.6 мкл, что уменьшает ошибки из-за недостатка материала.
• Электрохимический метод – более точный по сравнению с горизонтальными (фотометрическими) системами.

Вывод

Глюкометр – важнейший инструмент для диагностики скрытых проблем у кроликов. Метод среза когтя безопасен и минимизирует стресс. Добавьте в аптечку:

• Contour TS + тест-полоски.
• Когтерез и перманганат калия.

Помните: гипергликемия – не диагноз, а сигнал к действию. Если уровень глюкозы стабильно высок – покажите питомца врачу!

Используемая литература: 

1. Freckmann G., et al. (2015). «Accuracy of Blood Glucose Monitoring Systems». [PMC4478761].
2. Böhmer E. (2019). «Stress Hyperglycemia in Rabbits». Journal of Exotic Pet Medicine.
3. Varga M. (2014). «Textbook of Rabbit Medicine». Elsevier.

Сообщение Глюкометр в аптечке для кролика: как измерить глюкозу без вреда для питомца появились сначала на Rabbit Friendly.

Эта информация предназначена для ветеринарных врачей. Если у вас возникли вопросы о помощи вашему питомцу, мы рекомендуем обратиться за консультацией к специалисту.

Распространенность сердечно-сосудистых заболеваний у кроликов неизвестна, заболеваемость обычно увеличивается с возрастом, обычно после 4 лет. Крупные породы, такие как новозеландские белые кролики, находятся в особенной зоне риска.

Сердце кролика уникально в нескольких отношениях: трехстворчатый клапан состоит из двух, а не из трех створок, аортальный нерв не связан с хеморецепторами, а только с барорецепторами, легочная артерия и ее ветви сильно мышечные, а постоянная левая краниальная полая вена обычно присутствует и впадает в коронарный синус. Кроме того, правое и левое предсердия относительно большие по сравнению с остальной частью предсердий, а устье коронарного синуса довольно большое. Важным клиническим фактором является тот факт, что миокард кролика имеет ограниченное коллатеральное кровообращение и поэтому предрасположен к ишемии, опосредованной коронарной вазоконстрикцией. Грудная полость кролика чрезвычайно мала по сравнению с остальной частью его тела, и его сердце занимает большую часть грудной области по сравнению с другими животными. Средостение и перикард кролика обычно содержат жир, который может имитировать кардиомегалию у тучных животных.

Контакт с кроликом, страдающим сердечной недостаточностью должен быть сведен к минимуму, врачебные вмешательства должны быть проведены максимально осторожно. Этого можно достичь, осматривая кролика в тихой комнате и двигаясь медленно. Кролики ярко проявляют поведение жертвы, будучи добычей в дикой природе, и поэтому очень чувствительны к внешним раздражителям. При необходимости кролику можно дать седативные препараты, чтобы свести к минимуму риск самоповреждения (см. статью «Анальгезирующие препараты, используемые у кроликов»). При необходимости нужно обеспечить подачу кислорода, если у кролика наступает одышка или тахипноэ при контакте. У кроликов с подозрением на сердечную болезнь или респираторный дистресс первоначальный осмотр нужно сосредоточить на наблюдении за частотой и рисунком дыхания, получении частоты сердечных сокращений и ритма, аускультации грудной клетки, осмотре слизистых оболочек и пальпации пульса. Нормальная частота сердечных сокращений составляет 200–300 ударов/мин, а нормальная частота дыхания составляет 30–60 вдохов/мин; однако, частота дыхания может приближаться к частоте сердечных сокращений у стрессующих животных. Кролики являются облигатными носовыми дышащими; поэтому нельзя закрывать ноздри во время фиксации. Периферический пульс часто можно пропальпировать в центральной артерии уха, и он должен быть сильным и синхронным с сердцебиением. Обычно выслушиваются два тона сердца (S1 и S2). Отраженные звуки верхних дыхательных путей часто накладываются на сердечные звуки и могут имитировать шум; поэтому аускультация выполняется до тех пор, пока не будут прослушаны дыхательные и сердечные тоны. Аускультация любого шума должна сопровождаться эхокардиографией.

У кроликов с сердечными заболеваниями могут быть цианотичные или бледные слизистые мембраны, аритмии или сердечные шумы. У кроликов с застойной сердечной недостаточностью часто наблюдается тахикардия, тахипноэ и затрудненное дыхание; однако, по опыту, кашель встречается редко. Пульс может быть нерегулярным или слабым. Всю грудную клетку следует выслушивать, чтобы локализовать сердечные шумы и обнаружить дополнительные сердечные тоны (шумы галопа), аритмии и аномальные легочные звуки. Детский стетоскоп позволяет лучше локализовать сердечные тоны у кроликов, и предпочтителен для аускультации сердца, тогда как стетоскоп с большей диафрагмой больше подходит для аускультации легких. Аускультативные данные различаются у кроликов с застойной сердечной недостаточностью, и эти данные не являются патогномоничными. Врач может услышать приглушенные звуки сердца и легких при плевральном выпоте и усиленные бронхиальные звуки или хрипы при отеке легких. Однако отсутствие хрипов не следует использовать для исключения отека легких у этого вида. Большинство кроликов с застойной сердечной недостаточностью имеют усиленный поверхностный характер дыхания. Кроме того, хотя звуки сердца и легких могут быть приглушены у кроликов с плевральным выпотом, аналогичные данные можно обнаружить у тучных кроликов со значительными подкожными и интраторакальными жировыми отложениями.

Диагностика сердечно-сосудистых заболеваний основывается на полной истории болезни и физическом осмотре, а также на результатах диагностических тестов: рентгенограммы грудной клетки, электрокардиографии, эхокардиографии и рутинных анализов крови — их забирают для постановки окончательного диагноза и разработки плана лечения.

Рентгенография грудной клетки дает важную информацию о пациентах с сердечно- легочными заболеваниями, а именно, на ней можно оценить форму и размер сердца, легочный рисунок, сосудистый рисунок и другие стрктуры грудной клетки. 

Оценивая рентгенограмму грудной клетки, можно дифференцировать застойную сердечную недостаточность и респираторные заболевания. Рентгенографические данные, подтверждающие диагноз сердечного заболевания, аналогичны данным у других видов: увеличение сердца, расширение легочных сосудов, легочный интерстициальный и альвеолярный рисунок отека легких и плевральный выпот. Однако у нормального кролика границу краниального сердца обычно трудно отличить от краниального средостения. 

Электрокардиография — это простой и практичный диагностический тест для кроликов с предполагаемым или подтвержденным заболеванием сердца. Электрокардиограмма (ЭКГ) имеет решающее значение для диагностики и лечения аритмий или обмороков. ЭКГ также может быть полезным дополнением к базе данных по сердцу. ЭКГ не подходит для оценки или обнаружения расширения камер или гипертрофии. У большинства кроликов ЭКГ можно записать, когда животное бодрствует и находится в состоянии минимального ограничения. Запись ЭКГ производится, когда кролик находится в положении лежа на груди. Для проведения манипуляции используются беззубые электроды в виде крокодильчика, чтобы минимизировать травму кожи; затем наносится медицинский спирт или электродный гель на зажимы, для улучшения проводимости. Запись кривых нужно проводить с вертикальной калибровкой 2 см/мВ и горизонтальной скоростью бумаги 50 мм/с. Нормальный ритм кролика — синусовый и не включает дыхательную синусовую аритмию. Спонтанные изменения в комплексе QRS наблюдались у нормальных кроликов при серийных записях ЭКГ.

Референсные диапазоны для ЭКГ обобщены в таблице ниже.

Значения ЭКГ у кроликов

Эхокардиография обеспечивает чувствительный, точный, неинвазивный способ оценки структуры и функции сердца. Большинство кроликов переносят эхокардиографию без седации, что делает ее практичным диагностическим инструментом. У  кроликов с тахипноэ или одышкой кислород подается через лицевую маску во время фиксации.

Эхокардиографическое обследование может быть проведено, когда кролик находится в боковом или стернальном положении. Стандартные схемы, используемые для обследования собак и кошек, также могут быть использованы с кроликом. Из-за быстрого сердечного ритма и небольшого размера кролика, оптимальная оценка требует высокочастотного датчика (например, 7,5 МГц) и высокочастотного ультразвукового аппарата. Двумерная и M-режимная эхокардиография оценивает структуру сердца, размер камеры, толщину стенки и движение, а также экстракардиальные структуры, массы и плевральный выпот. Цветовая, спектральная и тканевая допплеровская эхокардиография оценивают направление и скорость кровотока, дальнейшее определение сердечных заболеваний с более глубоким пониманием систолической и диастолической функции.

Относительные структурные измерения аналогичны таковым у других видов млекопитающих — например, диаметр левого предсердия в 1–1,5 раза больше диаметра аорты, левое и правое предсердия сходны по размеру, а диаметр аорты и легочной артерии эквивалентны. Толщина свободной стенки левого желудочка приблизительно соответствует толщине межжелудочковой перегородки и в 2–3 раза толще свободной стенки правого желудочка. Коронарный синус, который окружает атриовентрикулярное соединение, обычно довольно большой и не должен непреднамеренно интерпретироваться как врожденная аномалия или структурный признак правосторонней сердечной недостаточности.

Очень важно обратить внимание на то, что седативные препараты при их использовании, особенно альфа-2 агонисты, такие как дексмедетомидин и ксилазин, могут влиять на сердечные показатели. Снижение процента фракционного укорочения, изменение соотношения E/A (пиковая скорость кровотока от силы тяжести в ранней диастоле [волна E] к пиковой скорости кровотока в поздней диастоле из-за сокращения предсердий [волна A]), снижение частоты сердечных сокращений и другие изменения отмечаются  при применении кетамина в дозе 50 мг/кг внутримышечно и ксилазина в дозе 4 мг/кг внутримышечно. Седация кетамином (20 мг/кг) и мидазоламом (2 мг/кг), вводимыми подкожно, оказывается менее кардиодепрессивной. 

Нормальные эхокардиографические значения приведены в таблице ниже.

ЭхоКГ измерения (М-режим и двухмерные измерения) у клинически здоровых белых новозеландских кроликов

Измерение кровяного давления. Гипотония не редко наблюдается у кроликов, анестезированных ингаляционными агентами. Артериальное кровяное давление, измеренное с помощью допплерографии хорошо коррелирует с прямым измерением периферического (на ушной артерии) кровяного давления у кролика. По методике, аналогичной для собак и кошек, ультразвуковой датчик потока допплера частотой 8,2 МГц помещается над ветвью лучевой артерии на медиальной стороне запястья, и замеры проводятся детской манжетой для измерения кровяного давления шириной 40%–50% окружности конечности. Систолическое кровяное давление в клинике обычно составляет 120–180 мм рт. ст. Косвенные изменения кровяного давления <80 мм рт. ст. указывают на гипотонию. У кроликов проявляются циркадные закономерности в частоте сердечных сокращений, а также как систолическом, так и диастолическом кровяном давлении, при этом все три параметра становятся выше ночью.

Препараты, используемые в кардиологической практике у кроликов, описаны в статье «Сердечно-сосудистые препараты для кроликов».

Источник: Katherine E. Quesenberry, Connie J. Orcutt, Christoph Mans, James W. Carpenterю FERRETS, RABBITS, AND RODENTS: CLINICAL MEDICINE AND SURGERY, FOURTH EDITION, 2021

Сообщение Диагностика сердечных заболеваний у кроликов появились сначала на Rabbit Friendly.

Согласно современным ветеринарным рекомендациям, профилактики глистов не существует. Антигельминтики предназначены исключительно для уничтожения паразитов и не предотвращают их появление. Несмотря на это, многие владельцы домашних животных, включая кроликов, продолжают следовать распространённым мнениям о необходимости регулярной профилактической дегельминтизации, особенно перед вакцинацией. Ветеринарные клиники нередко задают вопрос о том, проводилась ли «глистогонка», но причина этого не всегда ясна.

Важно понимать, что наличие глистов в организме животного не влияет на иммунный ответ на вакцинацию. Антигельминтики действуют как яды, и их применение может временно снизить иммунитет, что нежелательно перед вакцинацией. Ветеринарные специалисты настоятельно рекомендуют избегать профилактических мероприятий по дегельминтизации, так как они могут нанести больше вреда, чем пользы.

Исследования и рекомендации

Недавние исследования показывают, что регулярное применение антигельминтных препаратов без предварительного диагноза может привести к развитию устойчивости паразитов к лекарствам. Например, исследование, проведённое Kaulfuß в 2010 году, показало, что частая (раз в 6 месяцев и чаще) и неконтролируемая дегельминтизация у овец приводит к тому, что паразиты адаптируются и становятся устойчивыми к действующим веществам препаратов. 

Хотя исследований на кроликах пока нет, ветеринары рекомендуют применять данные о поведении паразитов у других травоядных животных. Владельцы кроликов могут сдать кал на анализ перед вакцинацией, что позволит избежать ненужного применения препаратов.

Как правильно проводить дегельминтизацию?

Если анализ подтвердит наличие глистов, рекомендуется использовать препараты на основе албендазола или фенбендазола в дозировке 15-20 мг/кг. Например, препарат Немозол (с действующим веществом албендазол) применяется в дозировке 1 мл на 1 кг веса животного. Также можно использовать Фебтал (фенбендазол), дозировку которого следует рассчитывать в зависимости от веса кролика.

Некоторые владельцы применяют препарат «Шустрик» для профилактики, но его использование не рекомендуется из-за слишком низкой дозировки действующего вещества. В 1 мл суспензии содержится всего 2,5 мг фенбендазола и 1,5 мг празиквантела. Для кролика весом 2 кг потребуется 16 мл суспензии! Это эквивалентно более чем 3 полным флаконам препарата за одно применение, что не только неэффективно, но и может привести к повышению резистентности глистов.

Рекомендованная схема дегельминтизации

Дегельминтизация должна проводиться поэтапно: сначала убиваются взрослые особи, а затем повторно через некоторое время для выведения молодых. Рекомендуемая схема при выявлении глистов — давать препарат (например, альбендазол) в дозировке 20 мг/кг, затем сделать перерыв на 10 дней и снова повторить. После этого вакцинацию лучше проводить не ранее чем через 2 недели, чтобы дать организму время восстановиться.

Заключение

Таким образом, профилактическая дегельминтизация кроликов не только не является необходимой мерой, но и может быть вредной для их здоровья. Важно полагаться на анализы и рекомендации ветеринаров, а не на устаревшие мифы. Заботьтесь о здоровье ваших питомцев!

Источники:

1. Kaulfuß, A., et al. (2010). «The impact of anthelmintic treatment on the development of resistance in gastrointestinal nematodes in sheep.» Journal of Veterinary Medicine.

2. Ветеринарные рекомендации по дегельминтизации домашних животных (2023). VetMed. 

Статьи по теме:

1. Вирусная геморрагическая болезнь кроликов
2. Инфекционные болезни кроликов
3. Профилактика заболеваний кроликов
4. Прививки кроликам: какие и когда делать?

Сообщение Надо ли гнать глистов профилактически? появились сначала на Rabbit Friendly.

Однако иногда случается так: хозяин замечает, что моча питомца становится красной и ошибочно считает, что там содержится кровь. Этому могут способствовать заболевания мочеполовой системы, например, аденокарцинома матки, уролитиаз, цистит. К подобным патологиям относятся полипы мочевого пузыря, пиелонефриты, инфаркты почек, синдромы диссеминированного внутрисосудистого свертывания крови и т.д. Нарушения репродуктивной функции, такие как снижение фертильности, увеличение частоты мертворождений, преждевременное прекращение лактации, дистоция и эмбриональная резорбция, являются клиническими признаками, тесно связанными с аденокарциномой матки. Развитие пиелонефрита сопровождается инфекциями, вызванными E. Coli (кишечная палочка), Klebsiella spp. (клебсиелла), Pasteurella multocida (пастерелла мультоцида) и Encephalitozoon cuniculi (энцефалозооноз). Любые отравления ядовитыми растениями являются первопричиной гематургии.

В некоторых случаях моча кроликов может окрашиваться в красный цвет из-за наличия порфирина и уробилина, которые образуются в результате распада гемоглобина. Интенсивность окраски может усиливаться при дегидратации, обычно связанной с ограничением потребления воды, а также при избыточном содержании кальция в рационе. Основным путем выведения кальция у кроликов является моча, в отличие от большинства млекопитающих, у которых кальций выводится преимущественно с желчью.

Кролики также чувствительны к интоксикации витамином D. Клиническая картина является неспецифичной, выявить патологию возможно при помощи рентгенографии мультиорганной минерализации. Некоторые лекарственные препараты обладают нефротоксическим потенциалом, что опасно для животных, страдающих от дегидратации. К таким препаратам относятся, например, гентамицин, тилетамин/золазепам (Телазол), нестероидные противовоспалительные препараты (НПВП).

Подобная моча может наблюдаться среди кроликов, которые потребляют пищу, богатую каротиноидами (например, морковь). В любом случае перечисленные клинические признаки требуют обращения к ветеринарному врачу.

Дифференциальная диагностика гематурии требует комплексного подхода, в связи с чем необходимо проведение общего анализа мочи, в частности, с цитологическим исследованием материала. Тщательный физикальный осмотр, ультразвуковая диагностика, рентгенография и дополнительные лабораторные исследования крови (с оценкой азотемии) позволяют поставить правильный диагноз. Для исключения инфекционной этиологии, рекомендуется проведение бактериологического исследования мочи, полученной путем цистоцентеза, с последующим выделением и идентификацией возбудителя. Для исследования доброкачественной гиперплазии эндометрия, а также ранних стадий аденокарциномы матки, обязательным условием является гистопатологическое исследование тканей матки.

Терапия будет зависеть от первопричины.  Для устранения инфекции требуется применение антибиотиков, таких как триметоприм, а в случаях мочекаменной болезни, а также гиперплазии матки, показано хирургическое вмешательство. У кроликов со злокачественными новообразованиями (например, аденокарциномой матки) после появления метастазов прогноз неблагоприятный, и в это время симптоматическое лечение в лучшем случае является паллиативным.  

Для профилактики дегидратации необходимо обеспечить постоянный доступ к свежей питьевой воде. При состояниях, угрожающих жизни, показана парентеральная инфузионная терапия для восполнения дефицита жидкости. Овариогистерэктомия, выполненная у половозрелых самок, является эффективной мерой профилактики развития новообразований матки в последующие годы.

При вскрытии также могут быть найдены морфологические подтверждения клинических подозрений.

Источник: Harkness and Wagner’s Biology and Medicine of Rabbits and Rodents FIFTH EDITION, «Hematuria and pigmented urine», с. 313-315.

Статьи по теме:

1. Заболевания органов мочеполовой и репродуктивной систем кроликов
2. Вода в рационе кроликов
3. Анализ мочи у кролика

Сообщение Почему у кролика красная моча? появились сначала на Rabbit Friendly.

Эта информация предназначена для ветеринарных врачей. Если у вас возникли вопросы о помощи вашему питомцу, мы рекомендуем обратиться за консультацией к специалисту.

Спинальную иглу 22-го калибра длиной от 1,0 до 1,5 дюйма вставляется в кожу посередине между этими точками и направляется перпендикулярно коже, к носу пациента. Стилет обычно не нужен из-за относительно небольшого размера большинства кроликов. После того, как игла проколола твердую мозговую оболочку и паутинную оболочку, необходимо внимательно следить за появлением спинномозговой жидкости. Жидкости нужно дать стечь в пустые стеклянные или пластиковые пробирки; не стоит прикреплть шприц или манометр, так как движения, вызванные присоединением шприца, вероятно, вызовут кровотечение, загрязняя жидкость. Если жидкость нельзя немедленно отправить в лабораторию, одна капля сыворотки кролика, добавленная к 10 каплям спинномозговой жидкости (СМЖ), сохранит клетки для цитологического исследования. В этом случае еще 10 капель СМЖ необходимо собрать в отдельную пробирку для подсчета клеток и анализа белка, если была добавлена сыворотка для сохранения клеток. Но если жидкость можно немедленно проанализировать, то 10 капель будет достаточно. Референсные значения для компонентов СМЖ у кроликов представлены в таблице ниже. Если необходимо провести миелографию, следует использовать люмбальную пункцию, а не церебелломедуллярную инъекцию, поскольку контрастное вещество обычно не будет проходить через экстрадуральную обструкцию, если инъекция сделана цистернально.

Референсные значения для анализа спинномозговой жидкости у кроликов:

Статья по теме: Гематологические и биохимические показатели кроликов

Источник: Katherine E. Quesenberry, Connie J. Orcutt, Christoph Mans, James W. Carpenterю FERRETS, RABBITS, AND RODENTS: CLINICAL MEDICINE AND SURGERY, FOURTH EDITION, 2021

Сообщение Сбор цереброспинальной жидкости у кроликов появились сначала на Rabbit Friendly.

Эта информация предназначена для ветеринарных врачей. Если у вас возникли вопросы о помощи вашему питомцу, мы рекомендуем обратиться за консультацией к специалисту.

Что исследуется в моче:

• Физические характеристики:
  • Цвет: Нормальная моча кроликов может варьироваться от светло-желтого до темно-желтого. Изменения цвета могут указывать на проблемы.
  • Прозрачность: Нормальная моча должна быть прозрачной. Мутная моча может указывать на наличие белка, клеток или кристаллов.
  • Запах: Неприятный запах может указывать на инфекцию.
• Химические показатели:
  • pH: Нормальный уровень pH мочи у кроликов обычно колеблется от 8 до 9. Изменения могут указывать на инфекции или метаболические расстройства.
  • Протеин: Наличие белка в моче может свидетельствовать о заболеваниях почек.
  • Глюкоза: Появление глюкозы может указывать на диабет.
  • Кетоны: Их наличие может говорить о метаболических расстройствах.
• Микроскопическое исследование:
  • Кристаллы: Наличие кристаллов может указывать на риск формирования камней в мочевом пузыре.
  • Цилиндры: Эти структуры могут указывать на повреждение почек.
  • Клетки: Наличие эритроцитов или лейкоцитов может свидетельствовать о воспалении или инфекции.

Обычно кроликам не требуется особая подготовка для сбора анализа мочи. Однако важно, чтобы моча была собрана в чистый контейнер во избежание загрязнения и неправильной интерпретации результатов.

Для того чтобы произвести забор мочи у кролика, нужно надавить на мочевой пузырь и собрать материал в необходимую чистую емкость. Нажатие должно быть достаточным, чтобы кролик мог опорожниться, но в то же время осторожным, чтобы уменьшить вероятность ятрогенного разрыва мочевого пузыря. 

В некоторых случаях цистоцентез может быть менее травматичен и, соответственно, более предпочтителен, чем ручное выдавливание. Цистоцентез у кролика похож на цистоцентез у других мелких животных.

Седация или анестезия требуются не всегда, однако они снижают риск того, что кролик вывернется, и будут повреждены внутренние структуры организма. Ультразвуковое сканирование помогает визуализировать мочевой пузырь и обнаружить любые аномалии мочевого пузыря, а цистоцентез под контролем ультразвука снижает риск повреждения других органов, включая слепую кишку. УЗИ прямо показано к использованию в случаях, когда размер мочевого пузыря очень мал. Иглы небольшого диаметра, прикрепленной к стерильному шприцу объемом 6 мл, достаточно, чтобы набрать объем для полного анализа мочи. Удерживая животное в дорсальном или боковом лежачем положении, нужно найти мочевой пузырь на вентральной средней линии, чуть краниальнее края таза, и ввести иглу после стерильной подготовки предлобковой области. 

Седированным или анестезированным для сбора образца мочи пациентам может проводиться катетеризация уретры, если необходимо выполнить терапевтическое промывание мочевого пузыря в случаях присутствия мочевого осадка или для установки мочевого катетера. Самок помещают в стернальное лежачее положение и находят отверстие уретры на дне влагалища. Для самцов кролика проводить экструзию и катетеризацию пениса удобнее в сидячем положении. В исследовательской работе с анестезированными самцами новозеландских белых кроликов ручная ретроградная катетеризация мочевого пузыря оказалась сложной из-за частого неправильного размещения катетера в эякуляторном канале и везикулярной железе. Чтобы минимизировать это осложнение, была разработана техника катетеризации «пальцевым давлением». В этой технике анестезированный самец кролика укладывается в положение лежа на спине. Используя стерильную технику, кончик смазанного катетера вводится в уретру полового члена. Кончик указательного пальца помещается непосредственно каудальнее лобкового симфиза, и пока катетер медленно вводится в уретру противоположной рукой, врач оказывает давление на эту точку указательным пальцем. Продвигающийся кончик катетера можно почувствовать на кончике пальца во время этого шага. После того, как катетер продвигается в просвет мочевого пузыря, его размещение подтверждается путем аспирации мочи.

Результаты анализа мочи должны интерпретироваться ветеринаром, который сможет оценить отклонения от нормы и предложить дальнейшие шаги, включая лечение или дополнительные исследования.

Значения анализа мочи у кроликов:

Статья по теме: Гематологические и биохимические показатели кроликов

Литература: CARPENTER’S EXOTIC ANIMAL FORMULARY, SIXTH EDITION, ISBN: 978-0-323-83392-9

Статьи по теме:

1. Заболевания органов мочеполовой и репродуктивной систем кроликов
2. Вода в рационе кроликов

Сообщение Анализ мочи у кролика появились сначала на Rabbit Friendly.

Важно не только проводить лечение, но и устранять причины ухудшения состояния питомца, такие как скука, стресс, чрезмерная линька, неправильное питание, дефицит или дисбаланс питательных веществ, болезни, токсины и ожирение. Хирургическое вмешательство назначается как можно реже, и в большинстве случаев предпочтение отдается терапевтическим методам. Тем не менее, учитывая скорость развития осложнений, важно незамедлительно обращаться за ветеринарной помощью.

Эта информация предназначена для ветеринарных врачей. Если у вас возникли вопросы о помощи вашему питомцу, мы рекомендуем обратиться за консультацией к специалисту.

Литература:

• CARPENTER’S EXOTIC ANIMAL FORMULARY, SIXTH EDITION, ISBN: 978-0-323-83392-9
• BSAVA Small Animal Formulary, 10th edition: Part B – Exotic Pets, ISBN: 978-1-910443-71-2

Подготовка статьи Яковлева А.С., Rabbits Hotel&Hospital

Сообщение Лекарственные средства для лечения желудочно-кишечных заболеваний у кроликов появились сначала на Rabbit Friendly.

1. Экзофтальм, характеризующийся аномальным выпячиванием глазного яблока, возникает по ряду причин:

• ретробульбарный абсцесс, сопровождаемый развитием стоматологических заболеваний;
• образование гематомы вследствие механической травмы;
• паразитарная инвазия, вызываемая ленточными червями (Taenia serialis);
• лимфома слезной железы из-за инфильтрации прилегающих тканей;
• опухоль глазницы;
• глаукома.

Окончательный диагноз ставится на основании сравнительной оценки положения, размера, форм обоих глазных яблок. 

Причину возникновения заболевания можно определить при помощи ряда диагностических инструментов:

• клиническое обследование: оценка положения третьего века, осмотр век , оценка положения хрусталика, стекловидного тела и др.;
• тонометрия: измерение внутриглазного давления для исключения глаукомы;
• тест ретропульсии;
• рентгенография черепа: производится для выявления инородных тел любого характера;
• ультрасонография глазницы: визуализация мягких тканей орбиты для выявления абсцессов и других объемных образований, с возможной последующей тонкоигольной аспирационной биопсией для цитологического исследования (например, для исключения лимфомы);
• компьютерная томография (КТ) и магнитно-резонансная томография (МРТ): эти методы позволяют провести детальную оценку положения орбиты и прилегающих тканей.

2. Во многих клинических случаях катаракты являются генетически обусловленными, то есть передаются крольчонку от матери. Иногда они носят осмотический характер, развивающийся на фоне сахарного диабета. 

Часто заболевание диагностируется ввиду инфицирования хрусталика, основной возбудитель – Encephalitozoon cuniculi. В результате у больного кролика могут возникнуть неблагоприятные осложнения, такие как разрыв капсулы хрусталика и вторичный увеит. С целью предотвращения энцефалитозооноза целесообразно проведение серологического исследования на наличие специфических антител, в частности, классов IgM и IgG. Несмотря на то, что увеит тяжело поддается симптоматической медикаментозной терапии, образование катаракты можно скорректировать при помощи интракапсулярной факоэмульсификации. Ввиду возможной полиорганной недостаточности рекомендуется провести оценку функционального состояния почек, сердечно-сосудистой и гепатобилиарной систем с использованием методов визуальной диагностики (ультрасонография, рентгенография) и биохимического анализа крови (например, глюкоза, фруктозамин).

Экстракция катаракты требует соответствующего офтальмологического хирургического оборудования. В процессе операционного вмешательства следует учитывать анестезиологические риски, обусловленные физиологическими особенностями кроликов: сложность интубации, склонность к брадикардии и др. Кроме того, в послеоперационный период наблюдается рецидивный рост кортикальных масс хрусталика.

В целом, картина выздоровления положительная: слепые животные демонстрируют удовлетворительную адаптацию при содержании в знакомой домашней обстановке с беспрепятственным доступом к пище.

3. Клиническая картина язвы роговицы характеризуется блефароспазмом, эпифорой, конъюнктивальной гиперемией, а также гнойными выделениями из конъюнктивального мешка. Для рассматриваемого заболевания также характерен передний увеит. Рекомендуется провести биомикроскопию роговицы с применением флуоресцеинового теста – это позволит оценить размер и глубину язвенного дефекта. 

Если были выявлены осложненные формы язвенных поражений, то ветеринарные специалисты проводят бактериологическое исследование соскобов с пораженной поверхности для идентификации возбудителя и определения его чувствительности к антибиотикам; при этом, медикаментозная терапия начинается незамедлительно.

Отсутствие своевременной терапии приводит к необратимым изменениям роговицы или прогрессированию язвенного процесса вплоть до перфорации органа и распространения инфекции внутри глаза, что значительно повышает риск перманентной потери зрения.

Форма лечения зависит от типа и местоположения язвы. Персистирующие, нерубцующиеся, вялотекущие язвы характеризуются масштабными повреждениями роговицы и нарушением нормальной барьерной функции лимба с развитием неоваскуляризации. В таких случаях стимуляция регенеративных процессов достигается удалением девитализированного эпителия после местной анестезии (к примеру, 0,5% раствором проксиметакаина/пропаракаина для глаз). Следует помнить о том, что при инстилляции глазных капель лишь около 5% нанесенного препарата проникает в роговицу, основная же часть резорбируется слизистой оболочкой носа и поступает в системный кровоток. В противном случае могут возникнуть неприятные побочные эффекты, такие как кардиоваскулярные, риск развития которых минимизируется использованием флаконов-капельниц, обеспечивающих оптимальный объем приема лекарственных препаратов, который около 20 мКл. 

Удаление эпителия осуществляется сухим аппликатором с ватным наконечником посредством ротационных движений. С целью профилактики вторичной бактериальной инфекции назначаются либо местные антибиотики широкого спектра действия в течение 7 дней, либо атропин, обладающий циклоплегическими и мидриатическими свойствами (1% каждые 12 часов в течение 2 дней, затем каждые 24 часа в зависимости от режима терапии).

Расплавленные, быстро прогрессирующие язвы роговицы требуют интенсивного применения топических антибактериальных препаратов, выбор которых должен основываться на результатах цитологического исследования соскоба роговицы, окрашенного по методу Грама. В качестве формы адъювантной терапии целесообразно применение аутологичной сыворотки (каждые 6 часов) для поддержания антиколлагеназной активности штаммов.

В случаях резистентности к антимикробной терапии или при глубоких язвах, затрагивающих большую часть роговицы, показана хирургическая интервенция – конъюнктивальная аутопластика с перемещением лоскута в область дефекта. При заживлении язвы роговицы с реэпителизацией и инкапсуляции инфекционного агента в строме возможно формирование абсцесса роговицы. Выявление стромальной опухоли осуществляется посредством проведения биомикроскопии с применением щелевой лампы; при этом пораженный участок не окрашивается флуоресцеином, что обусловлено сохранностью эпителиального слоя. Идентификация бактериального агента, определение его чувствительности к антибиотикам и последующее цитологическое исследование возможны только после деэпителизации роговицы. Терапия стромальных абсцессов предполагает интенсивное применение раствора хлорамфеникола, обладающего способностью проникать через интактный эпителий. При отсутствии положительной динамики в течение нескольких дней показаны кератэктомия и конъюнктивальная пластика.

4.Дермоидная киста. Иногда у домашних кроликов может наблюдаться врожденная дисплазия роговицы. В таких обстоятельствах терапия предусматривает хирургическое иссечение дермоидной кисты, аналогичный механизм реализуется среди кошек и собак.

Эктропион, энтропион, колобома, а также дисплазия век могут иметь как врожденный, так и приобретенный характер. Первичный кератит может быть следствием разнообразных патологий век. Клиническая картина энтропиона зависит от степени инвагинации или эверсии века, а также варьируется от незначительного раздражения конъюнктивы и/или роговицы, сопровождающегося эпифорой и выделениями из глаз, до развития кератита и язвы роговицы. Иногда наблюдаются дистихиаз и трихиаз. К тому же, эктропион и энтропион могут возникать как изолированно, так и совместно.

Следует помнить о том, что при дифференциальной диагностике следует исключить другие причины раздражения глаз.

Для исключения первичного заболевания рекомендовано промывание носослезного канала; затем применяется раствор местного анестетика (например, проксиметакаин 0,5%). Протекция роговицы может быть обеспечена применением глазных лубрикантов. В тяжелых случаях проводится хирургическое вмешательство, выполняемое по принципам, применяемым у собак и кошек. При наличии дистихиаза, их удаление выполняется путем лазерной эпиляции, электроэпиляции или криоэпиляции.

Дисплазия век, характеризующаяся избытком кожи над верхними слоями века, часто встречается у отдельных пород, например, французский баран. Хирургическая коррекция подобных дефектов зависит от их размера и локализации. В большинстве случаев возможно достижение адекватной адаптации краев раны.

5. Выпадение третьего века носит уни- или билатеральный характер, схожий с синдромом «вишневого глаза», который часто наблюдается среди собак. В большинстве случаев заболевание приводит к пролапсу, часто осложненному нарушением венозного оттока. В исследованиях западных коллег описаны проявления пролапса слезной железы, этиопатогенез которого предположительно связан с аномальной слабостью соединительной ткани, обеспечивающей фиксацию железы к окружающим орбитальным структурам. При отсутствии своевременной терапии существует риск полной потери зрения. Операция проводится посредством резекции и/или репозиции железы.

6. Патогенез аномального разрастания конъюнктивы имеет неизученный характер. В большинстве случаев наблюдается двустороннее поражение, характеризующееся формированием мембраноподобной структуры около бульбарной конъюнктивы. Зрительная функция снижается частично, слепота развивается редко. Сопутствующий конъюнктивит выражен незначительно, иногда наблюдается отек роговицы. Для коррекции данной патологии проводится операция. Прогноз определяется протяженностью резецируемых краев мембраны (4–5 мм заде от лимба). 

В самых тяжелых обстоятельствах проводится энуклеация – хирургическое удаление глазного яблока, век, конъюнктивы и третьего века из орбиты. Она показана при патологических процессах, локализованных в пределах глазного яблока, таких как эндофтальмит, внутриглазная неоплазия и механические травмы. Данный метод обеспечивает благоприятный косметический результат в послеоперационном периоде, поскольку удаляются только глазное яблоко и конъюнктива, в то время как экстраорбитальные ткани сохраняются.

Экзентерация – удаление глазного яблока, век, придатков глаза и максимально возможного объема прилежащих тканей орбиты. Она показана при заболеваниях, затрагивающих ткани, расположенные за пределами глазного яблока, и должна проводиться в случаях панофтальмита. Предпочтительной является транспальпебральная техника – экзентерация, начинающаяся с аппроксимации краев век посредством наложения простого непрерывного шва или с фиксации век двумя зажимами Эллиса.

7. Глаукома-повышение внутриглазного давления . Возникает в результате нарушения оттока внутриглазной жидкости. Часто бывает осложнением увеита, катаракты , травм глазного яблока. Состояние болезненное , в большинстве  случаев приводит  к слепоте. Лечение направлено на снижение давления . К хирургическим методам относятся лазерная , криодеструкция цилиарного тела, установка клапана Ахмеда. При стойком повышенном давлении несмотря на лечение и слепоте проводят энуклеацию глаза , так как перспектив восстановить зрение нет , а глаз является источником хронической боли и воспаления.

Источник: BSAVA Manual of Rabbit Surgery. Dentistry and Imaging. Chapter 17

Редактор статьи Роман Анатольевич Дузь, ветеринарный врач, специалист по офтальмологии животных

Сообщение Операции на глазах кроликов: хирургические методы и подходы появились сначала на Rabbit Friendly.

Современная ветеринарная медицина предлагает широкий ассортимент лекарственных средств, однако необходимо учитывать особенности организма кроликов, такие как чувствительность к определённым веществам и особенности их пищеварительной системы. В данной статье представлены различные препараты, используемые в терапевтической практике, а также показания к их применению с учётом анатомических и физиологических особенностей кроликов.

Эта информация предназначена для ветеринарных врачей. Если у вас возникли вопросы о помощи вашему питомцу, мы рекомендуем обратиться за консультацией к специалисту.

Литература:

• CARPENTER’S EXOTIC ANIMAL FORMULARY, SIXTH EDITION, ISBN: 978-0-323-83392-9
• BSAVA Small Animal Formulary, 10th edition: Part B – Exotic Pets, ISBN: 978-1-910443-71-2

Подготовка статьи Яковлева А.С., Rabbits Hotel&Hospital

Сообщение Разнообразные препараты для кроликов появились сначала на Rabbit Friendly.

• Общий анализ крови (ОАК): Позволяет оценить количество эритроцитов, лейкоцитов, тромбоцитов и гемоглобина. Это помогает выявить анемию, инфекции и воспалительные процессы.
• Биохимический анализ крови: Оценивает уровень различных ферментов и веществ, таких как глюкоза, белки, электролиты и показатели функции печени и почек. Помогает диагностировать проблемы работы внутренних органов, нарушения обмена веществ.
• Иммунологические тесты: Показывают наличие и количество антител к различным инфекциям или патогенам. Позволяют выявить наличие инфекционных заболеваний или иммунных расстройств.
• Специфические тесты на инфекционные заболевания: Выявляют конкретные инфекции, такие как миксоматоз, вирусную геморрагическую болезнь кроликов (ВГБК), и другие вирусные или бактериальные инфекции.
• Гемостазиограмма/коагулограмма: Оценивает работу системы свертывания крови, показывает время свертывания, уровень тромбоцитов и другие показатели. С помощью нее можно обнаружить проблемы с гемостазом.
• Витамины и гормоны:Показывает количество макро- и микроэлементов в организме, что важно для понимания работы внутренних органов и систем.
• Проба аутоагглютинации и перекрестная пробы: Выполняются перед переливанием крови для определения совместимости донорского материала и крови рецепиента.

Предварительная подготовка к взятию анализа крови для кроликов практически отсутствует. И вопреки привычным для людей и других животных рекомендациям выдерживать голод, кроликам голодать категорически запрещено. Стоит отказаться от посещения такой клиники, где вам могут рекомендовать прекратить кормление кролика на какое-то время. 

Эта информация предназначена для ветеринарных врачей. Если у вас возникли вопросы о помощи вашему питомцу, мы рекомендуем обратиться за консультацией к специалисту.

Для взятия крови у кроликов используют вену сафена, головную, яремную и краевую ушную вены и центральную ушную артерию.

Использование ушных вен, а у некоторых пород — центральной ушной артерии, не является идеальным вариантом, поскольку может возникнуть образование гематомы, синяков или тромбоза, а также шелушение кожи, особенно у пород с маленькими ушами. 

Вена сафена — идеальное место для венепункции у кроликов (см. фото). Чтобы улучшить видимость вены, используется спирт или хлоргексидин, чтобы раздвинуть шерсть; в некоторых случаях может быть применено забривание.

Ассистент удерживает кролика сбоку на боку и вытягивает верхнюю заднюю лапу. При необходимости кролика можно удержать в полотенце с покрытой головой. Сосуд легкодоступен через боковую поверхность большеберцовой кости, непосредственно проксимальнее скакательного сустава.

После сбора образца ассистент слегка надавливает пальцем или накладывает компрессионную повязку на место венепункции, чтобы предотвратить образование гематомы. Важно: повязку необходимо снять не позднее чем через 15 минут после окончания процедуры, чтобы кровоток был восстановлен!

Головные вены доступны у кроликов, но иногда их может быть трудно найти и перекрыть у мелких пород. Кроме того, венопункция головных вен может быть более стрессовой для пациента, поскольку обработчик работает рядом с головой кролика. Следует избегать использования этой вены для сбора крови.

У кроликов большие парные яремные вены, которые часто являются предпочтительным местом венепункции для очень спокойных или седированных кроликов или при сборе большего количества крови (например, для переливания крови). Однако визуализация яремной вены может быть затруднена у кроликов с избыточным весом или у самок с большим подгрудком. Для пункции яремной вены забривается область средней части шеи краниально к грудному входу. Кролика располагают так, чтобы передние лапы находились над краем стола, а голова была вытянута вверх, избегая чрезмерного разгибания головы. В качестве альтернативы, допускается оборачивание кролика полотенцем и укладка его в положение лежа на спине, вытянув голову и шею, чтобы обеспечить видимость яремной вены. 

Правильная интерпретация результатов анализов требует знаний и опыта, поэтому анализы должен рассматривать квалифицированный ветеринарный врач, который сможет оценить отклонения от нормы и предложить дальнейшие шаги, включая лечение или дополнительные исследования.

В данной статье представлена информация о средних, референсных и диапазонных значениях показателей крови кроликов. Эти таблицы рекомендованы для использования ветеринарными врачами. Владельцам рекомендовано рассматривать их как ознакомительный материал для понимания, что с самочувствием питомца может что-то быть не так, и формулировки запроса для обращения к специалисту.

Гематологические и биохимические показатели сыворотки крови кроликов

Референсные значения показателей венозной крови  у кроликов на анализаторе i-STAT EC8+

Уровни глюкозы и натрия в крови кроликов как диагностические показатели

Осмолярность и осмотическая активность могут быть рассмотрены для дифференциации истинной гипонатриемии от псевдогипонатриемии (может возникнуть при гиперлипидемии, тяжелом заболевании печени или застойной сердечной недостаточности).

Уровни гормонов в крови у кастрированных самцов и самок

Статья по теме: Гематологические и биохимические показатели кроликов

Литература:

1. Katherine E. Quesenberry, Connie J. Orcutt, Christoph Mans, James W. Carpenterю FERRETS, RABBITS, AND RODENTS: CLINICAL MEDICINE AND SURGERY, FOURTH EDITION, 2021
2. James W. Carpenter EXOTIC ANIMAL FORMULARY, FIFTH EDITION

Сообщение Анализы крови у кроликов появились сначала на Rabbit Friendly.